دانشگاه آزاد اسلامی
واحد جیرفت
بخش باغبانی
پایان نامه تحصیلی برای دریافت درجه کارشناسی ارشد رشته باغبانی گرایش اصلاح و فیزیولوژی گیاهان زینتی
اثر جیبرلیک اسید و بنزیلآدنین بر رشد رویشی و تغییرات رنگدانه های فتوسنتزی گیاهی گیاهان آپارتمانی آرالیای دروغین، شفلرا و فیکوس بنجامین در شرایط آبیاری میست
استاد راهنما:
دکتر معظم حسن پور اصیل
(در فایل دانلودی نام نویسنده موجود است)
تکه هایی از متن پایان نامه به عنوان نمونه :
(ممکن است هنگام انتقال از فایل اصلی به داخل سایت بعضی متون به هم بریزد یا بعضی نمادها و اشکال درج نشود ولی در فایل دانلودی همه چیز مرتب و کامل است)
چکیده
یكی از ویژگیهای گیاهان برگ زینتی، تولید مقدار كافی برگ و شاخه جانبی برای ایجاد یک ظاهر متراكم است. در برخی از موارد لازم است ارقام غیر شاخه زا را با تنظیم كنندههای رشد تیمار كنیم تا برگ و شاخه جانبی كافی برای رسیدن به هدف فوق (ظاهر متراكم گیاه) تولید کند. پركاربردترین عوامل شاخه زا، بنزیل آدنین و جیبرلیک اسید هستند كه هر دو از تنظیمکننده رشد گیاهی میباشند كه در گیاهان باعث تولید شاخه و برگ میشوند. این پژوهش در شرایط گلخانهای تحت سیستم آبیاری میست، توسط هورمونهای جیبرلیک اسید و بنزیل آدنین بر گیاهان برگ زینتی فیکوس بنجامین، شفلرا و آرالیای دروغین تحت محلولپاشی برگی مورد بررسی قرار گرفتند. جیبرلیک اسید و بنزیل آدنین در سطوح 0، 100 و 200 میلی گرم در لیتر توسط محلولپاشی برگی در طی سه مرحله با فواصل زمانی 15 روز یکبار انجام گرفت. این آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی و با چهار تکرار انجام شد. اثر هورمونهای جیبرلیک اسید و بنزیلآدنین در سطح 200 میلیگرم در لیتر بر تعداد برگ و ارتفاع گیاه موثر بود. بالاترین مقدار رنگدانه های فتوسنتزی در گیاهان برگ زینتی فیکوس بنجامین، شفلرا و آرالیا در سطح توام 200 میلیگرم در لیتر جیبرلیک اسید و بنزیلآدنین بدست آمد. بالاترین مقدار کربوهیدرات محلول در گیاهان برگ زینتی فیکوس بنجامین، شفلرا و آرالیا دروغین به ترتیب در سطح 200 میلیگرم در لیتر جیبرلیک اسید، 200 میلیگرم در لیتر جیبرلیک اسید + 100 میلیگرم در لیتر بنزیلآدنین و 200 میلیگرم در لیتر جیبرلیک اسید + 100 میلیگرم در لیتر بنزیلآدنین بدست آمد. بالاترین مقدار قند احیاء در سه گیاه برگ زینتی فیکوس بنجامین، شفلرا و آرالیا دروغین مربوط بود به تیمارهای 200 میلیگرم در لیتر و شاهد به ترتیب با میانگین 17/31، 58/57 و 28/40 درصد بود. با توجه به نتایج بدست آمده بیشترین مقدار قند احیاء در سه گیاه مورد بررسی مربوط بود به گیاه فیکوس بنجامین که نسبت به به دو گیاه برگ زینتی دیگر مقدار قند احیاء آن بیشتر بود. نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که غلظتهای توام 200 میلی گرم در لیتر تنظیمکننده های رشد جیبرلیک اسید و بنزیلآدنین، میزان رشد مورفولوژیکی، تسریع سنتز کلروفیل و کارتنوئید و میزان قند احیاء و کربوهیدرات محلول را به طور قابل توجهی در گیاهان برگ زینتی آرالیای دروغین، شفلرا و فیکوس بنجامین افزایش داد.
کلیدواژه ها: تنظیمکننده های رشد گیاهی، سطح برگ، قندهای احیاء، کربوهیدرات محلول، گیاهان برگ زینتی، مقدار کلروفیل برگ.
فصل اول : مقدمه
1-2 خلاصهای درباره تنظیمکننده رشد گیاهی جیبرلین و سیتوکنینها 3
1-3 اثرات فیزیولوژیکی جیبرلینها 6
1-4-1 سیتوکنینهای ترکیبی و آزاد و تجزیه آنها 8
1-4-2 اثرات فیزیولوژیکی سیتوکنینها 9
1-5 اثرات مواد رشد گیاهی در فرایندهای فتوسنتزی و تقسیط مواد غذایی.. 11
1-5-1 جیبرلینها و فتوسنتز. 11
1-5-2 سیتوکنینها و فتوسنتز. 14
1-6 معرفی گیاهان مورد مطالعه. 17
فصل دوم: بررسی منابع. 19
2-1 اثرات تنظیمکننده های رشد گیاهی.. 20
2-1-1 اثرات تنظیمکننده های رشد گیاهی بر تغییرات مورفولوژیکی.. 20
2-1-2 اثرات تنظیم کننده های رشد گیاهی بر تغییرات فیزیولوژیکی.. 30
فصل سوم: مواد و روش های آزمایشگاهی.. 32
3-1 شرایط اقلیمی محل اجرای آزمایش… 33
3-2 تهیه ظروف کاشت و خاک گلدان. 33
3-5 مواد شیمیایی مورد استفاده در پژوهش… 36
3-6 طرح مورد استفاده تیمارهای آزمایش… 36
3-8- کاربرد هورمونها روی گیاهان. 37
3-9 پارامترهای رشدی و مورفولوژیک… 37
3-9-11 وزن تر برگ، ساقه، ریشه و کل گیاه 39
3-9-12 وزن خشک برگ، ساقه، ریشه و کل گیاه 39
3-10-6-2 پارامترهای بیوشیمیایی.. 40
3-10-1 سنجش مقدار کلروفیل و کاروتنوئید. 40
3-10-2-1 رسم منحنی استاندارد. 41
3-10-2-3 تهیه محلولهای مورد نیاز. 41
3-10-2-4 تهیه محلول سولفات مس… 41
3-5-6-4 تهیه محلول فسفومولیبدیک اسید. 41
3-10-3 کربوهیدراتهای محلول. 42
3-10-3-1 رسم منحنی استاندارد. 42
3-10-3-2 منحنیهای استاندارد مورد استفاده 44
فصل چهارم: نتایج.. 45
4-1 نتایج آزمایش گیاه برگ زینتی آرالیای دروغین.. 46
4-1-1 پارامترهای مورد مطالعه، 60 روز پس از اولین محلولپاشی.. 46
4-1-1-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 46
4-1-1-1-5 محتوای کلروفیل برگ.. 47
4-1-1-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 47
4-1-2 پارامترهای مورد مطالعه، 120 روز پس از اولین محلولپاشی.. 51
4-1-2-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 51
4-1-2-1-3 محتوای کلروفیل برگ.. 51
4-1-2-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 52
4-1-3 پارامترهای مورد مطالعه، 180 روز پس از اولین محلولپاشی.. 56
4-1-3-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 56
4-1-3-1-9 وزن تر برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 58
4-1-3-1-10 وزن خشک برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 58
4-1-3-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 59
4-1-3-3 پارامترهای شیمایی.. 64
4-1-3-3-2 کربوهیدرات محلول. 64
4-2 نتایج آزمایش گیاه برگ زینتی شفلرا اکتینوفیلا.. 65
4-2-1 پارامترهای مورد مطالعه، 60 روز پس از اولین محلولپاشی.. 65
4-2-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 65
4-2-1-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 67
4-2-2 پارامترهای مورد مطالعه، 120 روز پس از اولین محلولپاشی.. 71
4-2-2-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 71
4-2-2-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 72
4-2-3 پارامترهای مورد مطالعه، 180 روز پس از اولین محلولپاشی.. 77
4-2-3-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 77
4-2-3-1-10 وزن تر برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 79
4-2-3-1-11 وزن خشک برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 79
4-2-3-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 80
4-2-3-3 پارامترهای شیمایی.. 86
4-2-3-3-2 کربوهیدرات محلول. 86
4-3 نتایج آزمایش گیاه برگ زینتی فیکوس بنجامین.. 87
4-3-1 پارامترهای مورد مطالعه، 60 روز پس از اولین محلولپاشی.. 87
4-3-1-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 87
4-3-1-1-3 طول شاخه های جانبی.. 88
4-3-1-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 89
4-3-2 پارامترهای مورد مطالعه، 120 روز پس از اولین محلولپاشی.. 93
4-3-2-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 93
4-3-2-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 94
4-3-3 پارامترهای مورد مطالعه، 180 روز پس از اولین محلولپاشی.. 99
4-3-3-1 پارامترهای مورفولوژیکی.. 99
4-3-3-1-11 وزن تر برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 101
4-3-3-1-12 وزن خشک برگ، ساقه، ریشه و وزن کل. 102
4-3-3-2 پارامترهای رنگدانه های فتوسنتزی.. 103
4-3-3-3 پارامترهای شیمایی.. 110
4-3-3-3-2 کربوهیدرات محلول. 110
فصل پنجم: بحث و نتیجهگیری.. 112
5-1 پارامترهای رشد و مورفولوژیک… 113
5-3 وزن تر و خشک برگ، ساقه، ریشه و کل. 119
5-4 میزان قند احیاء و کربوهیدرات محلول. 120
5-5 نتیجه گیری……………………………………………………………………………………………………………122
فصل ششم منابع…….………………………………..…..……………………………..124
کشف مواد رشد گیاهی
1-1-1 جیبرلینها
درحضور ماده بازدارنده رشد فوزاریک اسید (5 –n بوتیل پیکولینیک اسید) مرحله تصفیه و خالص سازی ماده ی تولید شده ی باکانا جلوگیری می شود. به هرحال، درسال 1935 یابونا مادهای کریستالی شکل فعال را از محیط کشت استریل تصفیه شده جیبرلا فوجیکوری جدا کرد (یابونا، 1935). این ماده هنگامی که در ریشه های گیاهچههای برنج به کار رفت باعث تحریک رشد آن شد و جیبرلینA نامیده شد. این اولین باری بود که اصطلاح جیبرلین در منابع علمی مورد استفاده قرار میگرفت. یاباتا و سیمیکی (1983) در کریستاله کردن جیبرلین Aو جیبرلین B موفق بودند اما به علت جنگ، مطالعه بر روی جیبرلین کنار گذاشته شد. در دهه 1950 مطالعات متمرکزی توسط دانشمندان انگلیسی، آمریکایی و ژاپنی بر روی خواص تنظیمکنندگی رشد، جیبرلیک اسید و شناسایی جیبرلین در عصاره قارچی صورت گرفت و آنها سرانجام این ترکیب را در گیاهان عالی کشف کردند. درسال 1954 محققان انگلیسی (برایان و همکاران، 1954) خصوصیات تنظیمکننده رشد گیاهی جیبرلیک اسید را در فرآورده حاصل از قارچ Gibberella fujikuroi تشخیص دادند. درسال 1955 دانشمندان آمریکایی (استولا وهمکاران، 1955) آنچه را که جیبرلین A یا جیبرلین X میباشد از محیط کشت تصفیه شده و استریل جیبرلا فوجیکوری شناسایی کردند. همچنین در سال 1955 دانشمندان ژاپنی (تاکاهشی و همکاران، 1955) دریافتند که جیبرلین A حاوی سه ترکیب متمایز است که آنها را ، و نامیدند. هم اکنون توافق کلی بر این است که جیبرلین X، جیبرلیک اسید و ترکیبات مشابهی هستند. در حقیقت امروزه جیبرلیک اسید و GA3 با هم مترادف میباشند. در طی سال 1956 رادلی موادی مشابه جیبرلیک اسید در گیاهان شناسایی نمود و از آن زمان تاکنون جیبرلینها به عنوان یک ماده عمومی گسترش یافته در گیاهان عالی نشان داده شده است (تاکاهاشی و همکاران، 1991).
تاکاهاشی و همکاران در سال 1957، ترکیب را از جیبرلا فوجیکوری تشخیص دادند و نشان داد که شبیه به جیبرلین A است که توسط استودال در سال 1955 کشف شده بود اما هیچ وجه تشابهی برای یا وجود ندارد. مک میلان و تاکاهاشی (1968) شمارههای مشخصی را از جیبرلین تا بدون توجه به منشا آنها در نظر گرفتند. این روش امروزه نیز برای بیش از 90 نوع جیبرلین شناخته شده و رایج نیز، استفاده می شود.
1-1-2 سیتوکنینها
هابرلنت (1913) نشان داد که مواد ترشح شده از آوند آبکشی قابلیت تحریک در تکثیر سلولی در بافتهای غده سیب زمینی را دارد. تقریبا یک سال بعد، ون آوربیک و همکاران (1914) نشان دادند که مواد ایجاد شده طبیعی در شیره نارگیل (آندوسپرم مایع) توانایی تسریع تکثیر سلولی در جنینهای تازه داتورا را دارا میباشد. ون اوربیک و همکاران (1944) گزارش دادند که عصاره موجود در جنین تاتوره، مخمر، جوانه گندم و پودر بادام، تقسیم سلولی را در محیطهای کشت جنین تاتوره تسریع کردند و به دنبال آن نشان دادند که این مواد از گستردگی عمل لازم برخوردار هستند. تحقیق هابرلنت توسط جابلونسکی و اسلوگ درسال 1954 توسعه یافت، آنها نشان دادن که سلولهای بافت آوندی محتوی موادی هستند که تقسیم سلولی را در گیاهان تنباکو تحریک می کنند. میلر و همکاران در سال b1955 اولین کسانی بودند که از جداسازی و تصفیه کینتین (6 فورفوریل آمینو پورین) خبر دادند، که این ماده از DNA موجود در اسپرم کهنه و اتوکلاو شده شاه ماهی به دست آمده و آنها این ترکیب را کینتین نامیدند. زیرا این ماده قابلیت تسریع در تقسیم سلولی با سیتوکینز را در بافت مغزی تنباکو دارا بود (میلر و همکاران، a1955). هال و دروپ (1955) نشان دادند که با اتوکلاو کردن مخلوط آدنین و فورفوریل آمین می توان کینتین را تولید کرد و به دنبال آن نشان دادند که کینتین می تواند از تجزیه فراوردههای DNA به دست آید. میلر در سال 1961 از شناسایی یک ترکیب طبیعی شبیه کینتین در ذرت گزارش داد، این ترکیب بعدا زآتین نامیده شد. لتام (1963) اثر زآتین را به عنوان یک عامل تحریک کننده تقسیم سلولی ذرت بیان نمود و بعدا خواص شیمیایی این ماده را تشریح کرد (لتام، 1964). شاو و ویلسون (1964) در آزمایشی دیگر ساختمان زآتین را شناسایی کردند و نشان دادند که این ماده یک ترکیب مصنوعی نبوده است. بعد از طبقه بندی منابع موجود در این زمینه کشف زآتین را به لتام و میلر نسبت دادند (1963). از زمان کشف زآتین تاکنون سیتوکنینهای اضافی بی شماری یافت شده اند و در سراسر سلسله گیاهی دیده میشوند.
1-2 خلاصهای درباره تنظیمکننده رشد گیاهی جیبرلین و سیتوکنینها
1-2-1 جیبرلینها
جیبرلینها گروهی از مواد رشد گیاهی میباشند که از نظر ساختاری دارای اسکلتی از جیبرلان میباشند (شکل 1-الف). این مواد، تقسیم سلولی و طویل شدن سلول را تحریک می کنند و دیگر اعمال تنظیمکنندگی آنها به روشی مشابه جیبرلیک اسید انجام می شود.
GA3 اولین جیبرلین تجارتی قابل دسترس بود. این ترکیب از لحاظ قدمت تاریخی نیز جیبرلیک اسید نامیده شده است و در سیستمهای سنجش زیستی به عنوان یک شاخص استاندارد از آن استفاده شده است و به همین دلیل فرمول ساختمانی این ترکیب نماینده بیش از 90 نوع جیبرلین شناخته شده امروزی میباشد (شکل 1-ب).
شکل 1- 1 الف فرمول ساختمانی انت-جیبرلان که ستون اصلی برای تمام جبرلین ها است (راست). 1-ب فرمول ساختمانی برای جیبرلیک اسید (GA3) (چپ)
جیبرلینها برای اولین بار در قارچ جیبرلا فوجیکوری شناسایی شدند. از زمان کشف جیبرلینها تاکنون این مواد در سراسر گیاهان شامل نهاندانگان، بازدانگان، سرخسها، جلبکهای قهوهای، جلبکهای سبز، قارچها و باکتری ها به طور وسیعی یافت شده اند (لانگ،1970).
به طور کلی پذیرفته شده است که جیبرلینها از طریق مسیر مالونیک اسید در شاخه های متوسط جوان در حال رشد فعال و دانه های در حال نمو سنتز میشوند. نشان داده شده است که جیبرلینها در تعدادی از فرآبندهای فیزیولوژیک گیاهان به کار گرفته می شوند. اما جنس و گونه به اضافه دیگر عوامل تعیین خواهند کرد که کدام یک از جیبرلینها بیشترین تاثیر در انجام پاسخ را در گیاهان دارد. موارد زیر واکنشهایی هستند که نشان می دهند که توسط جیبرلینها تنظیم میشوند: رشد ساقه، گلدهی گیاهان دوساله در سال اول، گلدهی، جوانه زنی بذر، دوره بروز جنسیت، پیری، پارتنوکارپی، به میوه نشستن و رشد.
جانشینی فتالمید 377 و 94 (1- کلروفتالمید و سیکلو هگزان کربو کساید) در تعدادی از سیستمهای گیاهی، علمی مشابه جیبرلین از خود نشان داده است (روداوی و همکاران، 1991).
1-2-2 سیتوکنینها
سیتوکنینها ترکیباتی با استخلاف آدنین میباشند که باعث تسریع تقسیم سلولی شده و دیگر فعالیتهای تنظیمکنندگی را به روشی مشابه کینتین (6 فورفوریل آمینو پورین) انجام می دهند.
اولین سیتوکنین توسط اتوکلاو از DNA اسپرم شاه ماهی جدا شد و کینتین نامیده شد (6 فورفوریل آمینوپورین) زیرا این ترکیب قادر بود که تقسیم سلولی با سیتوکنینرا دربافت مغز تنباکو سرعت بخشد. اولین سیتوکنین به وجود آمده طبیعی از دانه های نارس ذرت جدا گشت و زآتین نامیده شد (6-4-هیدروکسی -3- متیل- ترانس 2- بوتنبل- آمینو،پورین). امروزه بیشترین سیتوکنین یافته شده در گیاهان زآتین می باشد (شکل 1-2).
شکل 1-2 فرمول ساختمانی برای (6-دهیدروکسی-3-متیل-ترانس-2-بوتیل-آمینو، پورین)
سیتوکنینها تقریبا در تمام گیاهان عالی، خزهها، قارچهای بیماریزا و غیر بیماریزا و همچنین در باکتری ها و در RNA+ تعداد بی شماری از میکروارگانیسمها و سلولهای حیوانی یافت شده است. درحال حاضر بیش از 200 نوع سیتوکنین طبیعی و مصنوعی وجود دارد (ماتسوبارا، 1990).
سیتوکنینها در نقاط مریستمی، نواحی دارای قابلیت رشد مداوم شامل ریشهها، برگهای جوان و میوه های در حال رشد و دانهها یافت میشوند. تصور می شود که این مواد در ریشهها ساخته شده و به شاخهها منتقل میشوند، زیرا گزارشات متعددی وجود دارند که نشان می دهند سیتوکنینها در شیره گیاهی درون آوندهای چوبی یافت شده اند اما سیتو کنینها در بیشترین سطح در میوه ها و بافتهای دانه وجود دارند که بیان کننده سنتر سیتوکنینها در آن جا میباشد.
سیتوکنینهای متعددی درگیاهان یافت میشوند که جنس، گونه و دیگر عوامل تعیین خواهند کرد که کدام یک از بیشترین تاثیر را در انجام واکنش دارند. در زیر فهرستی از واکنشهای بیولوژیکی ارائه می شود که سیتوکنین در آنها به کار رفته است: تقسیم سلولی، تشکیل اندام، بزرگ شدن سلول و اندام، به تاخیر انداختن تجزیه کلروفیل، رشد کلروپلاست، به تاخیر انداختن پیری، باز و بسته شدن روزنهها، توسعه جوانه و شاخهها، انتقال انتخابی مواد غذایی و مواد آلی در بافتهای تیمار شده توسط سیتوکنینها.
امروز تعدادی از سیتوکنینهای مصنوعی وجود دارند که سه نمونه از آنها شامل کنیتین (6 فورفوریل آمینوپوردین)، (6- بنزیل آمینوپوردین) و (6- بنزیل) -9- (2- تتراهیدروپیرانسول) – پورین هستند.
تعداد صفحه :155
قیمت :14700 تومان
بلافاصله پس از پرداخت لینک دانلود فایل در اختیار شما قرار می گیرد
و در ضمن فایل خریداری شده به ایمیل شما ارسال می شود.
پشتیبانی سایت : * parsavahedi.t@gmail.com
در صورتی که مشکلی با پرداخت آنلاین دارید می توانید مبلغ مورد نظر برای هر فایل را کارت به کارت کرده و فایل درخواستی و اطلاعات واریز را به ایمیل ما ارسال کنید تا فایل را از طریق ایمیل دریافت کنید.
14,700 تومانافزودن به سبد خرید